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大鼠肝星状细胞培养实验

实验方法原理

       选用Wistar大鼠经消化酶灌注肝脏后,用分离液分离HSC,通过观察其自发荧光及其显著特征性结构的脂肪染色、细胞免疫化学染色等方法鉴定。


实验材料

      雄性 SD 大鼠


试剂、试剂盒

      戊巴比妥钠    小牛血清   DMEM   酶消化液I、Ⅱ   Nycodenz   D-Hanks’液   HBSS   台盼兰


仪器、耗材

      手术器械   尼龙网   相差显微镜   荧光显微镜


实验步骤

一、实验步骤
 

      1. 大鼠腹腔麻醉后在超净台上剖腹,进行门静脉插管。
 
      2. 以D-Hanks’液灌注,同时剪开下腔静脉,冲掉血液后,改灌以100 ml 酶消化液I(0.05% IV 型胶原酶)。
 
      3. 待肝脏变软后,离体肝脏并剪碎,继续以酶消化液II(含20U/ml DNase I 的0.05% IV 型胶原酶)消化15 min,尼龙网过滤后以450 g 离心5 min(4℃,下同)。
 
      4. 以HBSS 重悬沉淀至10 ml,再混以20 ml Nycodenz 液,分置于离心管中,并分别覆以2-3 ml HBSS,1450 g 离心16 min 后取界面细胞。
 
      5. 以HBSS重悬后再次离心收集细胞,以DMEM重悬后进行细胞计数,并判断存活率和产量,最后按照常规方法接种(10细胞/cm),次日换液,以后每2-3 天换液一次。
 
      6. 传代方法:弃去培液后以D-Hanks’液洗两次,加0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化,镜下观察细胞突起回缩(2-5 min左右),以完全培液(DMEM+10% NBS)终止反应(若不用EDTA,可以不需离心), 充分吹打后以 1:2-1:3 接种,然后继续培养(5% CO2,37℃)。


二、结果

      接种次日,光镜下可见细胞呈星芒状,胞质内有脂滴,荧光镜下328  nm 处见自发荧光。附照片(图 1)。

 

图 1. 原代培养第 2 天的大鼠肝星状细胞

其他


一、讨论

      进一步鉴别需要做免疫组化:Desmin  和α-SMA;后者在细胞激活后才表达。也采用过无须原位消化的方案,完全可行,只不过消化时间更难控制!实验采用原代培养的或传代后9代内的细胞(最好5 代以内)。

二、文献

      1. 袁桃霞,张锦生,张月娥,等. 大鼠肝 Ito 细胞的体外培养及肝素对其抑制作用的观察. 上海医科大学 学报,1996,23(2):90-93.



                       此文转载:丁香通


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