培养细胞可用各种方法染色，有一般和特殊之分；一般染色为观察细胞一般形态之用，特殊染色为用于观察细胞的特殊成分和结构的染色方法。
Giemsa染色法
实验方法原理 Giemsa 染色是最常用的方法之一，它简便、快速，适用于多种细胞和染色体染色。
试剂、试剂盒 Giemse甘油甲醇Sorensen
仪器、耗材 滴管玻璃片
实验步骤
1. 染液制备
（1）称Giemse粉0.5 g、甘油22 ml，在研钵内先用少量甘油与Giemsa充分混合，研磨至无颗粒；
（2）再将剩余甘油混在一起；56 ℃保温2 小时后，加入33 ml纯甲醇，保存于棕色瓶内。
2. 染色步骤（以盖片培养法或涂片法为例）
（1）用pH6.8~7.38的Sorensen缓冲液，按1：9 比例取Giemsa染液和Sorensen缓冲液混合配成染色液；
（2）细胞标本用甲醇固定10 分钟，或1：3醋酸/甲醇固定30 分钟，用滴管把染色液布满玻片上（注意不要有气泡，用染色缸染色亦可）；
（3）染10~15 分钟后，用自来水冲去玻片上多余的染料，空气干燥、二甲苯透明、光学树脂胶封固。
3. 结果
胞核染成紫红色或蓝紫色，胞浆染成粉红色。
注意事项
1. 染色液宜现用现配，保存时间最好不超过48 小时，旧染液染色效果不好。
2. Giemsa 对pH 极敏感，缓冲液pH 值要调准确，否则染色效果不好。
3. 用染色缸染色时，随染色时间的延长，在染液表面常形成一层氧化膜（发亮），这层氧化膜易附在片上形成污秽，且不易除掉。因此在用染色缸染色，尤其用的不是现配者时，染色前应先用小片滤纸刮除液面的氧化层再进行染色。
4. 染色完毕，应把标本浸入水中洗除染液，或用自来水直接冲掉多余染液。
苏木精伊红染色法
实验材料 苏木精
试剂、试剂盒 甘油冰醋酸伊红铵矾
仪器、耗材 载玻片盖玻片
实验步骤
1. 37 ℃温BSS漂洗3 次，每次20 秒~1 分钟；中性福尔马林固定30 分钟；
2. 先用蒸馏水漂洗1 次；再用蒸馏水稀释的苏木精液（1/20）染10 分钟；
3. 自来水洗、置入1 %NaHCO3液中漂洗至蓝紫色；
4. 伊红水溶液中染30 秒~1 分钟；
5. 蒸馏水洗，迅速通过丙酮2 次，每次3~5 分钟；
6. 通过2：1 丙酮/二甲苯3 次，每次1~2 分钟；
Feulgen染色法
本方法中酸的离解根重要，若温度过低、或酸度不够，醛基暴露不充分，染色会过浅；反之，酸解过分，能导致DNA完全解聚，而染色体的染色反应减弱。细胞中RNA对酸比较稳定，醛基难游离，不被着色，为DNA特异性染色的原因。
试剂、试剂盒 HClSchiff亚硫酸钠品红
仪器、耗材 棕色瓶
实验步骤
1. 单层盖片法培养细胞，Carnoy或醋酸/甲醇固定20 分钟；
2. 投入1 N HCl 1~2 分钟（室温）；
3. 投入1 N HCl 8~10 分钟（60 ℃）；
4. 投入Schiff剂中染色1~5 小时（10 ℃暗处）；
5. 漂洗液洗2 次，每次2 分钟；
6. 蒸馏水漂洗2 次，每次3 分钟；
7. 脱水
75 %→100 %酒精；
8. 透明
二甲苯2 次，每次3 分钟；
9. 封片
把盖片置于载物片上（细胞面向上），滴树胶少许，再加较大盖片覆盖；
10. 盖片上加微型重物加压，置数日，树胶干后观察。
镜下观察可见，细胞核染成粉红色至紫红色，胞质无色（为观察DNA，胞质可不必复染）。
吖啶橙染色荧光观察法
实验方法原理 吖啶橙（Acridine Oringe：AO）是一种常用荧光染料，用于直接染色观察活细胞或固定染色观察细胞均可。吖啶橙对DNA和RNA都能染色，快速、简便和有一定的特异性。吖啶橙对活细胞毒性小，配成2×10－4～1×10－4 可用于直接染色观察法更好。
实验材料 细胞
试剂、试剂盒 酒精PBSCaCl2醋酸
实验步骤
1. 用盖片单层培养细胞，从瓶中取出后速用温Hanks液漂洗3~5 秒，以去除培养基中血清（于此步可进行直接染色观察活细胞）；
2. 投入95 %酒精或醋酸/甲醇固定15~30 分钟，微干（盖片边缘接触滤纸）；
3. 1 %醋酸作用30 秒；
4. 1×10－4 吖啶橙染30 秒或1 分钟；
5. 0.1 M CaCl2处理30 秒~2 分钟；
6. PBS漂洗3 次，每次数秒；
7. PBS封片，荧光显微镜下直接观察并拍照。
注意事项
1. 观察中应随时填加PBS以避免标本干涸：如用油浸镜观察，需再覆以大盖片盖在附有细胞盖片上（细胞面朝上），用无荧光性油浸观察。
2. 标本在95 %酒精中能保存数日后仍可观察，如退色，再用AO染色。镜下观察，DNA呈翠绿色，RNA呈火红色 。
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来源：百度学术
